检验标本正确采集方法与临床的沟通演示文稿.pptVIP

检验标本正确采集方法与临床的沟通演示文稿.ppt

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(3)诊断最有价值的时间:如急性心肌梗死的测定在发病后4-6小时采样较好;病毒性感染抗体检查在急性期及恢复期采双份血清检查对诊断意义较大;药物监测应根据药物峰值效应在药物分布期结束后监测。 1.2 采取最具代表性的样本 (1)如大便检查应取脓、血病理部分;骨髓穿刺、脑脊液穿刺应防止外伤性血液的渗入;痰样本的留取应防止唾液的混入。 (2)脑脊液第一瓶含有少量红细胞,宜做细菌学检查;第二瓶宜做生化、免疫检查;第三瓶宜做细胞学检查。 (3)静脉采血时,患者的姿势及止血带的松紧都可以影响某些检验结果,通常采用卧姿或坐姿采血,止血带使用1分钟内采血,见回血后立即松开,通过这些措施以保证血样本质量。 当前30页,总共61页。 1.3采取最合乎要求的样本 (1)抗凝剂的正确使用:根据检验要求选择抗凝剂的种类,抗凝剂与样本的比例必须正确无误。 (2)防溶血、防污染:溶血对生化检测血钾、ALT、AST、LDH、TBIL、DBIL等结果产生正干扰,对Na、Cl、Ca等结果产生负干扰;血气分析和厌氧菌培养需防止接触空气;细菌培养时避免非病原菌的污染。 (3)防止过失性的采样:避免输液侧抽血作K、Na、GLU等测定。 1.4 标本的唯一性标志 (1)不同的检验项目用不同的真空管。 (2)标本容器上应注明: ●送检科别及床号; ●患者姓名及病历号; ●全院联网后加条形码; ●采样时间。 当前31页,总共61页。 2、血标本的正确采集(具体见抗凝剂的正确使用) 3、大、小便标本采集 3.1尿标本留取   尿标本以晨尿为佳.检测尿道感染应留取前段晨 尿;检测前列腺感染应留取少量后段晨尿。   检测尿路结石,留取疼痛时的尿为好;尿淀粉酶 测定应留取疼痛发作后3-4h尿液。 3.2便标本的采集   便常规标本,应留取有病理改变的部分,如留有 黏液、脓血和稀水样标本送检.   如:检测蛲虫卵,因粪检出阳性率极低,应在患 者入睡后2h,用棉拭子在肛门皱壁上蘸取或用透明胶 粘取标本。 当前32页,总共61页。 4.细菌标本的采集 细菌标本的采集应在抗生素使用前或停药一周后,如果不能停用,应在下次使用前采集。 细菌标本切勿使用物流传递,必须人工送检,不能低温保存必须室温保存。 4.1用于厌氧菌培养的标本(目前尚未开展)    避免标本暴露在空气中,最好用一次性注射器采集,立即接种在厌氧袋或瓶内。 下列情况者应做厌氧菌培养 从未开放的脓肿抽取浓液,特别是伴有恶臭或含有硫磺颗粒时; 通过胸腔穿刺抽出的胸腔穿刺液; 从耻骨联合上方做膀胱穿刺吸出或从肾造管口收集尿液; 从气管切开吸取肺分泌物; 穿刺抽出胸腹积液; 通过腰穿抽出的脑脊液; 插入小导管,用注射器和针头吸出窦道标本。 当前33页,总共61页。 4.2 痰标本采集 为了减少上呼吸道分泌物的影响,留取标本时,应 先用生理盐水漱口后从深部咳痰,盛于无菌痰杯送检。 4.3 血培养标本 用于血培养的标本采血量要足够,对成人每瓶血 培养应采血10ml不得少于5ml ,婴儿不少于2ml,骨 髓应不少于5ml。绿色双相瓶。 多次培养的血标本应采取双侧双瓶培养,每次采 血应在不同部位的血管穿刺,不能从静脉插管内抽 血,2次分离出同样菌种,是确定病原菌的有力证据。 防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培 养成败的关键问题,以下三个方面对培养能否成功十 分关键! 当前34页,总共61页。 要求: 4.3.1 皮肤消毒3步法: a、75%酒精擦拭静脉穿刺部位50秒以上; b、用2%碘酊(作用30秒)或碘伏棉签(作用60秒)消毒皮肤,从穿刺点向外以2—3cm直径画圈进行消毒。 c、75%酒精脱碘(对碘过敏的患者只能用75%酒精消毒,消毒60秒,待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺)。 4.3.2 培养瓶消毒3步法: a、用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子; b、75%酒精作用60秒; c、在血液注入血培养瓶之前,用无菌纱布或棉签消除橡皮塞子表面残余的酒精,然后注入血液。 4.3.3 培养瓶接种程序: 抽取血液后,不要换针头,直接注入血培养瓶中,轻轻颠倒混匀,以防止血液凝固。如果同时做需氧和厌氧培养,应同时进行需厌氧培养,先将标本的一半接种到厌氧瓶中,然后再将剩余一半注入需氧瓶中,严格防止将空气注入厌氧瓶中。 当前35页,总共61页。 研究表明,仅抽血液培养1套(包括需、厌氧两瓶)分离率约80%,采集2套分离率约90%,而培养3套分离率约为99%,因此在确定是感染病人后,初期需在不同部位采集1—3套(2—6瓶)作培养。 为何做厌氧培养???

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