4.实验四__浮游植物采集和定量.pptx

实验四 浮游植物采集和 定量 ■ 1.掌握浮游植物采集 、 浓缩的常用方法； ■2. 了解浮游植物计数框 的结构； 学习 、 掌握浮 游植物计数的方法。 编辑ppt 一 、 实验目的： ■ 应用显微镜的成像原理， 并借助浮游植物计数 框 ， 计算单位体积浮游 植物的数量。 二 、 实验原理： •编辑ppt 筒 、鲁哥氏液（碘液） 、 甲醛 、标签纸。 ■ 光学显微镜 、 100µl移液 枪 、浮游植 pt计数框 ■ 广口瓶 、乳胶管（医用输 液管） 、浮游生物网 、量 三 、 实验仪器 、用品 4• 调查工具 1 、采水器 •编辑ppt 采用特种尼龙布制成 ， 网口圆形， 网底呈圆锥状开口 ， 网底开口处 扎系开关阀门 。 定性样品采集(针 对浮游植物 、 原生动物和轮虫等) 采用25 ﹟浮游生物网(网孔 0 .064mm)； 枝角类和挠足类等 浮游动物采用13 ﹟浮游生物网(网 孔0 . 112mm) ， 在表层中拖滤1~ 3min 。 2. 浮游生物网 •编辑ppt 4 、广口瓶（标本瓶） 3 、透明度盘 •编辑ppt 4.浮游植物定量： 5.浮游动物定量： •编辑ppt 四 、实验内容 ： 海洋采样点的选择应与环境监测站相一致 ， 或根据污染、 赤潮发生范围等确定采样点。 2.采样层次 、采水量及采样次数。 水深15m以内的浅海 ， 采表（水下0.5m） 、底两层； 水 深大于15m ， 采表 、 中 、底（距底0.5m） 三层。 可分层采水 ， 也可以各层采水等量混合采得1000 ml水 样后装入广口塑料瓶 ， 应立即加入10-15 ml碘液（即 鲁哥氏液） 固定 。每一瓶都应有标签标明时间 、地点 、 站号 、样品号 、采水量 、水层 、温度等。 采样次数： 可以每月一次 ， 一般每季度采样一次 ， 最少 要春季和夏末秋初各采一次。 鲁哥氏液配置方法： 将6克碘化钾溶于20 ml水中 ， 待其 完全溶解后 ， 加入4克碘充分摇动 ， 待碘全部溶解后定 容到100 ml 。 固定浓度为1L编水p 加10-15 ml鲁哥试 。 1.采样点的选择。 原生动物 、轮虫 微小甲壳动物 1～5 采集对象 采样量（升） 成熟甲壳动物 10～50 藻 类 1～2 定量样的采集 •编辑ppt 1 四 、实验内容 ： 3.定量样品沉淀与浓缩 所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置 ， 使浮游植物完全沉 淀 。沉淀是一种圆柱形分液漏斗 。如无沉淀器也可用 量筒 、烧杯或在原水样瓶中静置沉淀。 ■ 静置沉淀24-48 h后 。再用乳胶管或橡皮管（医用输 液管） 利用虹吸原理小心地抽出上部不含藻类的清液。 一般约剩下20-40 ml沉淀物转入30或50 ml的定量瓶 中 ， 用上述清液冲洗沉淀器2-3次 ， 洗液仍倒入定量瓶 中使水量恰好达到30或50 ml 。然后贴上标签 ， 标签 上要记载采集时间 、地点 、采水量 、站号 、样品号、 水层和温度。 •编辑ppt 2 四 、 实验内容 ： 3.沉淀与浓缩 ■ 虹吸动作要十分仔细 、 小心 。开始时虹吸管一端放在 沉淀器内约三分之二处 ， 另一端套接在已经用手挤压 出空气的橡皮球上 ， 然后轻轻松手并移开橡皮球使清 液流出 ， 为了避免漂浮水面的一些微小藻类进入虹吸 管而被吸走 ， 管口应始终低于水面 。虹吸管内清液的 活动不宜过快 ， 可用手指轻捏管壁以控制流量 ， 当吸 到原水样的3/5以上时 ， 应使清液一滴一滴地流下 。 吸 出的清液要用一洁净的器皿装盛 ， 以便在浓缩过程在 出故障时 ， 可重新倒入沉淀器中浓缩 ， 不必新采水。 •编辑ppt 3 将样品倒入量筒中沉淀浓缩直接在广口瓶中浓缩， •编辑ppt 但要确定体积 4 4. 浮游植物定性： 浮游植物 样品采集参照文献( 国家环保总 局 ， 2002 )的方法 。定性样品用 孔径约0.064 mm的25号浮游生物 网在水面下约0.5 m处以适当的速 度作“ ∞ ”字形来回拖动1～3 min ， 获得的浓缩样分为两份 ， 一 份立即用适量的鲁哥氏液固定 ， 另一份活体样品于24小时内