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附件20
化妆品中α-熊果苷等4种原料的检验方法
α-Arbutin and other 3 kinds of components in cosmetic
1 范围
本方法规定了高效液相色谱法测定化妆品中α-熊果苷、熊果苷、氢醌和苯酚的含量。
本方法适用于液态水基类、膏霜乳液类、凝胶类、面膜类、粉类化妆品中α-熊果苷、熊果苷、氢醌和苯酚含量的测定。
2 方法提要
样品经甲醇超声提取后,采用高效液相色谱系统分离,荧光检测器检测,根据保留时间定性,峰面积定量,以标准曲线法计算含量。如有阳性结果,应用液相色谱-串联质谱法、气相色谱-串联质谱法进行定性确证。
本方法中α-熊果苷、熊果苷、氢醌和苯酚的检出限、定量下限及取样量为1.0 g时检出浓度和最低定量浓度见表1。
表1 α-熊果苷、熊果苷、氢醌和苯酚的检出限、定量下限、检出浓度和最低定量浓度
序号
原料名称
检出限
(ng)
定量下限
(ng)
检出浓度
(μg/g)
最低定量浓度
(μg/g)
1
α-熊果苷
1.0
2.5
2.0
5.0
2
熊果苷
1.0
2.5
2.0
5.0
3
氢醌
0.10
0.30
0.20
0.60
4
苯酚
0.10
0.30
0.20
0.60
注:本方法中的熊果苷即指β-熊果苷。
3 试剂和材料
除另有规定外,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
3.1 甲醇,色谱纯。
3.2 微孔滤膜(0.45 μm)。
3.3 标准品:α-熊果苷等4种原料的标准品信息详见附录A。
3.4 标准储备溶液:分别称取α-熊果苷等4种原料标准品(3.3)各10 mg(精确至0.00001 g),置于不同10 mL容量瓶中,用甲醇(3.1)溶解并定容至刻度,配制成浓度均为1 mg/mL的标准储备溶液。
4 仪器和设备
4.1 高效液相色谱仪,荧光检测器。
4.2 天平。
4.3 离心机,转速不低于14000 r/min。
4.4 超声波清洗器。
4.5 涡旋振荡器。
5 分析步骤
5.1 混合标准溶液的制备
分别准确量取α-熊果苷标准储备溶液(3.4)1 mL、熊果苷标准储备溶液(3.4)1 mL、氢醌标准储备溶液(3.4)0.1 mL和苯酚标准储备溶液(3.4)0.2 mL,置同一个10 mL容量瓶中,用甲醇(3.1)定容至刻度,配制成α-熊果苷、熊果苷、氢醌和苯酚浓度分别为100、100、10、20 μg/mL的混合标准溶液。
5.2 混合标准系列溶液的制备
准确量取不同体积的混合标准溶液(5.1),用甲醇(3.1)配制成浓度如表2所示的混合标准系列溶液。
表2 标准储备溶液浓度及混合标准系列溶液浓度
序号
原料名称
标准储备溶液浓度
(μg/mL)
混合标准溶液浓度
(μg/mL)
混合标准系列溶液浓度
(μg/mL)
1
α-熊果苷
1000
100
0.25
0.5
1
2
8
20
2
熊果苷
1000
100
0.25
0.5
1
2
8
20
3
氢醌
1000
10
0.025
0.05
0.1
0.2
0.8
2
4
苯酚
1000
20
0.05
0.1
0.2
0.4
1.6
4
5.3 样品处理
称取样品1.0 g(精确至0.001 g),置10 mL具塞比色管中,加入甲醇(3.1)至刻度,涡旋振荡30 s,使样品与提取溶剂充分混匀。密塞,超声提取20 min,放置至室温,取适量样品溶液离心(转速14000 r/min)5 min,取上清液经微孔滤膜(0.45 μm)(3.2)过滤,取续滤液作为待测溶液。必要时用适量甲醇(3.1)稀释。
5.4 参考色谱条件
色谱柱:C18柱(4.6 mm×250mm,5 μm),或等效色谱柱;
流动相:A:水,B:甲醇(3.1);梯度洗脱程序详见表3;
柱温:20 ℃;
流速:0.5 mL/min;
进样量:5 μL;
检测波长详见表4。
表3 流动相梯度洗脱程序
时间/min
V(A)/%
V(B)/%
0.0
95
5
21.0
95
5
22.0
55
45
43.0
50
50
48.0
50
50
48.1
0
100
50.0
0
100
50.1
95
5
60.0
95
5
表4 α-熊果苷、熊果苷、氢醌和苯酚的检测波长
序号
原料名称
激发波长(nm)
发射波长(nm)
1
α-熊果苷
292
337
2
熊果苷
292
337
3
氢醌
298
345
4
苯酚
280
318
5.5 测定
在“5.4”色谱条件下,取混合标准系列溶液(5.2)分别进样,进行色谱分析,以标准系列溶液浓度为横坐标,峰面积为纵坐标,绘制标准曲线。
取“5.3”项下的待测溶液进样,根据保留时间定性,测得峰面积,根据标准曲
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