医学动物实验操作技术.ppt

2、肌肉注射给药原理：将药液注入动物的肌肉组织，经毛细血管吸收进入血液循环。器材：1m1注射器1支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。第84页,共112页，2024年2月25日，星期天方法步骤：(1)操作时1人先将豚鼠捉持保定好。(2)另1人用左手抓住豚鼠的1条后肢，右手拿注射器，常规消毒注射部位。(3)将注射器针头在动物后肢大腿外侧肌肉丰富处呈60度角，迅速刺入后注入药液。注射量：0.01ml／g。第85页,共112页，2024年2月25日，星期天四、兔的给药方法(一)灌胃给药原理：将药液直接注入兔的胃内。器材：兔开口器、14号胃管、注射器1支、生理盐水、烧杯、石蜡油。第86页,共112页，2024年2月25日，星期天步骤：1、将兔放进保定架内，助手用手轻轻压住兔的背部，避免兔的挣扎。2、灌胃者用在手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使兔被动张口。3、右手将开口器从一侧口角插入口腔并固定。4、用泡在石蜡油中的胃管，经开口器的孔插入，向前推进约15cm，可达胃内。5、在插管时应将胃管另一端泡在水中确认没有冒气泡，即可用注射器经胃管注入药液。第87页,共112页，2024年2月25日，星期天灌胃量：80-100ml／只／次。注意：在灌胃过程中，避免误插入气管。第88页,共112页，2024年2月25日，星期天三、兔耳缘静脉或兔耳中央动脉穿刺（用于兔的给药、抽血）：原理：穿刺兔的耳缘静脉或耳中央动脉。器材：兔保定架、注射器1支、生理盐水、烧杯、酒精、碘酒、棉球。第89页,共112页，2024年2月25日，星期天方法步骤：(1)将兔放在保定架内保定。(2)酒精消毒并揉搓血管，使兔的耳缘静脉或耳中央动脉充盈。第90页,共112页，2024年2月25日，星期天(3)用左手食指和中指夹住兔的耳缘静脉或耳中央动脉近心端，拇指和小指夹住耳郭边缘部分，无名指和小指放在耳郭下作垫。(4)右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针头插入血管，放松对静脉近心端的压迫，缓慢把地药液注射进血管，或将血液抽出来。注射或采血量：5一10ml。第91页,共112页，2024年2月25日，星期天五、吸入给药1、气管内滴注法2、经口腔和经气管给药法3、吸入室法大小鼠气管插管技术六、经肠给药1、兔直肠给药2、麻醉后小肠或十二指肠灌注给药第92页,共112页，2024年2月25日，星期天一、小鼠的采血——摘除眼球采血法：原理：将小鼠的眼球摘除后取血液的方法。器材：眼科弯镊、试管。第五节样品采集方法第93页,共112页，2024年2月25日，星期天方法步骤(1)左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位;(2)左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出。(3)用眼科弯镊夹去眼球，将鼠倒立，用试管接住流出的血液。(4)采血完毕立即用纱布压迫止血。采血量：每次0.6-1.0ml/次。小鼠眼内眦取血动画小鼠眼眶后静脉丛取血第94页,共112页，2024年2月25日，星期天二、大鼠的采血眼眶后静脉丛(窦)取血：器材：毛细管(玻璃或塑料均可)、1％肝素溶液、干燥皿、乙醚、试管、干棉球。第95页,共112页，2024年2月25日，星期天方法步骤：1、先将毛细管浸泡在1％肝素溶液中数分钟，然后取出干燥备用。2、将大鼠进行麻醉，使大鼠保持侧卧位。3、左手拇指、食指抓住两鼠耳之间的颈部头皮，并轻轻向下压迫颈部两侧，致大鼠静脉血回流障碍，眼球外突，眶后静脉丛充血。4、右手持毛细管由大鼠的内毗部插入结膜，使毛细管与眶壁平行地向喉头方向推进，深度约3—5mm。5、轻轻旋动毛细管，使其穿破静脉丛，让血流顺毛细管流出。采血量：0.4—0.6ml／次。第96页,共112页，2024年2月25日，星期天第97页,共112页，2024年2月2